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聚羟基脂肪酸酯高产菌株的筛选

来源:用户上传      作者: 张松梅

  摘 要:目的:探讨聚羟基脂肪酸酯产生菌的筛选方法。方法:从土壤中取样,经过尼罗蓝荧光初筛、苏丹黑染色复筛,筛选菌株。结果:成功地获得聚羟基脂肪酸酯生产菌并将其命名为Rhizobium sp.H2-5,其胞内产物产率为36.96%。结论:通过尼罗蓝荧光初筛、苏丹黑染色复筛进行聚羟基脂肪酸酯高产菌株筛选,方法准确、可靠,值得应用推广。
  关键词:聚羟基脂肪酸酯;尼罗蓝;筛选
  1 材料与方法
  1.1 材料及试剂
  Ls-C50L立式压力蒸汽灭菌器(江阴滨江医疗设备厂);HZQ-Q 全温振荡摇床(中国哈尔滨东联电子技术开发有限公司);Friocell 生化培养箱(BMHIndustruments Co.);Anke TGL-16G 高速离心机(上海安亭科学仪器厂);S-3700N扫描电子显微镜(日本日立公司);1%的尼罗蓝溶液; 0.3%(w/v)的苏丹黑B染液、0.5%(w/v)的番红染液等。
  富集培养基(g/L)[1]:醋酸钠10.0,酵母粉1.5,Na2HPO4・12H2O 3.8,KH2PO42.65,MgSO4・7H2O 0.2,CaC12 0.05,FeC130.01,ZnSO40.01;筛选培养基:含琼脂2%,尼罗蓝浓度为50μg/mL的富集培养基。
  1.2 方法
  1.2.1 初筛[2]
  取溶于水的土壤样品上层液1.0mL,接于10.0mL富集培养液中32℃富集培养24h,反复传代培养至获得纯培养菌株。取富集培养液对灭菌后筛选培养基进行梯度稀释,然后涂布到初筛培养基上。初筛培养基32℃恒温条件下倒置培养48h,在波长365nm紫外灯下观察,标记并挑取发荧光的单菌落保存。
  1.2.2 复筛
  纯培养菌株摇床培养48h后,离心分离弃上清液,挑取离心后得到的菌体涂片、干燥、固定,苏丹黑B染液染色15min,洗脱至无色,再用番红染液复染2min,水洗,镜检观察是否有蓝黑色的脂肪颗粒[3]。
  1.2.3 PHA提取
  取复筛后的菌株摇床培养,收集、离心发酵液,收集菌体并烘干至恒重,称量得干菌体重量(CDW/g)。加入氯仿超声提取,向提取液中加入50ml甲醇水溶液析出白色絮状固体PHA[4],抽滤分离出PHA,再次烘干至恒重,称量得PHA提取量。
  1.2.4 鉴定
  制涂片进行革兰氏染色以及芽孢染色,显微镜下观察菌体大小、形态以及有无芽孢生成。
  2 结果
  2.1 初筛
  菌落呈现黄绿色,黄色和橙色荧光色。根据荧光色的差异分得11株纯培养物,接种至斜面培养基上,4℃低温保存。
  2.2 复筛
  菌体外围泛红,菌体内部可见明显的蓝黑色颗粒的菌株可能是产生 PHA的细菌。
  2.3 胞内产物提取率
  根据PHA提取率(%)=Wp:Wc=(PHA 提取量/CDW)×100%[5]计算各产物的提取率。菌株H2-5的胞内产物产率最高,达到 36.96%。其次为H2-2,提取率为27.32%,具体结果见表1。
  2.4 鉴定结果
  菌株H2-5的菌落呈圆形,表面光滑,大小均一,边缘整齐,菌落潮湿呈淡黄色,半透明。革兰氏染色结果表明菌株 H2-5 为革兰氏阴性菌,菌体形状为杆状,无荚膜,不形成芽孢。
  3 结束语
  聚羟基脂肪酸酯(polyhydroxyalkanoate,PHA)是可以由很多细菌合成的一种细胞内聚酯,在生物体内主要作为细胞内碳源贮藏性物质而存在,因而具有广泛应用的价值[6]。本研究采用尼罗蓝荧光初筛、苏丹黑染色复筛进行聚羟基脂肪酸酯高产菌株筛选,扩大了菌株资源,并获得一株新菌株,为进一步开发PHA的应用奠定基础。此外,我们还对菌株H2-5进行了生理生化实验、并绘制生长曲线。结果与文献[7]所述一致,均表明菌株H2-5不能水解利用淀粉作为碳源,也不能利用柠檬酸盐,且适应期短,生长快速,接种18h左右就可达到稳定状态。对提取菌株H2-5基因组DNA进行16S rDNA 基因扩增测序,结果表明H2-5为根瘤菌属。
  参考文献
  [1]张圆,孙雪南,陈邦,等.利用微生物混合培养技术生产聚羟基烷酸(PHA)研究[J].微生物学报,2003,43(006):799-804.
  [2]YilmazM,Soran H,Beyatli Y.Determination of poly-B-hydroxybutyrate(PHB)production by someBacillusspp.World Journal of M-icrobiology& Biotechnology,2005,21: 565-56.
  [3]Ganduri V,Ghosh S,Patnaik P. Mixing control as a device to increase PHB production in batch fermentations with cocultures of Lactobacillus delbrueckii and Ralstonia eutropha[J].Process Biochemistry,2005,40: 257-264.
  [4]堵国成,陈坚.真养产碱杆菌积累聚-β-羟基丁酸发酵条件的研究[J].生物工程学报,2000,16(1):103-107.
  [5]Shang L,Jiang M,Chang H. Poly( 3-hydroxybutyrate) synthesis in fed-batch culture of Ralstonia eutropha with phosphate limitation under different glucose concentrations[J].Biotechnology Letters,2003,25: 1415-1419.
  [6]Mooibroek H,Oosterhuis N,Giuseppin M,et al. Assessment of technological options and economical feasibility for cyanophycin biopolymer and high-value amino acid production[J].Applied microbiology and biotechnology,2007,77(2): 257-267.
  [7]Klemm D,Heublein B,Fink HP,et al. Cellulose: fascinating biopolymer and sustainable raw material[J].Angewandte Chemie International Edition,2005,44(22):3358-3393.
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