人血浆中全反式维甲酸、１３－顺式维甲酸和９－顺式维甲酸浓度的监测

来源:用户上传      作者: 唐　蕾　胡俊勇　崔颖鹏　任　斌

　　【摘要】 目的 建立高效液相色谱法同时测定人血浆中全反式维甲酸、13-顺式维甲酸和9-顺式维甲酸浓度。方法 色谱柱为KromasilC18柱（4．6 mm×250 mm，5 μm）；柱温为室温。流动相A：甲醇；流动相B：0．01 mol/L醋酸钠缓冲液（pH=5．7），梯度洗脱，流速1 ml/min；检测波长340 nm。结果 全反式维甲酸、13-顺式维甲酸和9-顺式维甲酸血药浓度在1～200 ng/ml范围内，浓度与峰面积比有良好的线性关系，最低检测浓度为0．5 ng/ml。全反式维甲酸方法回收率为97．22%～108．80%，日内RSD≤8．24％，日间RSD≤11．34%；13-顺式维甲酸方法回收率为98．62%～104．80%，日内RSD≤8．02％，日间RSD≤11．70%；9-顺式维甲酸方法回收率为97．74%～102．24%，日内RSD≤7．72％，日间RSD≤9．17%。结论 本方法简单、快速、灵敏、重现性好，适用于全反式维甲酸、13-顺式维甲酸和9-顺式维甲酸临床血药浓度监测及人体药代动力学研究。
　　【关键词】全反式维甲酸；13-顺式维甲酸；9-顺式维甲酸；血药浓度；高效液相色谱法
　　
　　Determination of all-trans,13-cis-and 9-cis-retinoic acid in human plasma by HPLC
　　
　　TANG Lei,HU Jun-yong,CUI Ying-peng,et al.Department of Pharmacy,the First Affiliated Hospital of Sun Yat-Sen University,Guangzhou 510080,China
　　
　　【Abstract】 Objective To establish a HPLC method for determination of all-trans,13-cis-and 9-cis-retinoic acid in human plasma.Methods A Kromasil C18 column （4．6 mm×250 mm，5 μm） was adopted.The mobile phase of gradient elution was composed of 0．01 mol/L sodium acetate buffer (pH=5．7) and methanol.The flow rate was 1 ml/min.The UV detector was operated at 340 nm.Results The assay procedure was shown to produce linear calibration curves over the range of 1-200 ng/ml of retinoic acid in plasma.The detect limitation were 0．5 ng/ml.The recovery of all-trans,13-cis-and 9-cis-retinoic acid were 97．22%-108．80%,98．62%-104．80% and 97．74%-102．24%,respectively.The RSD within day and betten days were less than 8．24％ and 11．34% for all-trans retinoic acid,less than 8．02％ and 11．70% for 13-cis-retinoic acid and less than 7．72％ and 9．17% for 9-cis-retinoic acid.Conclusion This method is found to be reproducible,convenient and sensitive for plasma concentration monitoring and clinical pharmacokinetics study of retinoic acid.
　　【Key words】
　　All-trans retinoic acid;13-cis-retinoic acid;9-cis-retinoic acid;Plasma concentration;HPLC
　　
　　维甲酸是维生素A 的天然氧化代谢产物，有多种立体异构体，包括全反式维甲酸(all-trans retinoic acid,ATRA)、13-顺式维甲酸（13-cis-retinoic acid,13-CRA）和9-顺式维甲酸（9-cis-retinoic acid,9-CRA）。其通过维甲酸受体系统而发挥生物学效应，能抑制多种肿瘤细胞增殖，对肿瘤细胞具有诱导分化作用，以及促进细胞凋亡[1]。维甲酸体内代谢异常，可能导致正常细胞分化异常和肿瘤的发生。维甲酸类药物已用于临床，尤其是全反式维甲酸已成为目前治疗急性早幼粒细胞性白血病的最有效药物之一[2]。通过对维甲酸的药动学研究及体内浓度监测，可提高维甲酸类药物抗肿瘤疗效，有助于开发新的维甲酸类药物抗肿瘤治疗方案。本文参考文献[3-5]，建立了一种灵敏、准确的维甲酸血药浓度HPLC测定法，旨在为维甲酸临床血药浓度监测及人体药代动力学研究提供测定方法。
　　
　　1 材料与方法
　　
　　1．1 仪器 Waters高效液相色谱仪（600型低压梯度泵，717型自动进样器，486型紫外检测器，Millennium32色谱工作站）；XW-80A旋涡混合器（上海医科大学仪器厂）；3K18高速冷冻离心机（Sigma）；高速离心机（美国雅培公司TDx仪附件）。
　　1．2 药品与试剂 ATRA、13-CRA、9-CRA对照品(Sigma,纯度：98％)，阿维A酸（内标，罗氏公司）。甲醇为色谱纯试剂，其余试剂均为分析纯。
　　1．3 色谱条件 色谱柱为Kromasil C18柱（4．6 mm×250 mm，5 μm）；柱温为室温。流动相A：甲醇；流动相B：0．01 mol/L 醋酸钠缓冲液（pH=5．7），梯度洗脱方案见表1。检测波长340 nm。
　　
　　1．4 血药浓度测定法
　　1．4．1 ATRA、13-CRA与9-CRA混合标准溶液配制 分别精密称取ATRA、13-CRA与9-CRA对照品适量，置于10 ml容量瓶中，以甲醇溶解并定容，制得浓度为100 μg/ml的ATRA、13-CRA与9-CRA储备液。精密吸取ATRA、13-CRA与9-CRA储备液适量，置于同一10 ml容量瓶中，甲醇稀释至刻度，制得ATRA、13-CRA与9-CRA浓度分别为0．05、0．25、0．5、1、2．5、5、10 μg/ml的混合标准溶液。
　　1．4．2 内标液配制 取内标阿维A酸适量，置于10 ml量瓶中，以甲醇溶解并定容，即为100 μg/ml的储备液。精密吸取阿维A酸储备液适量，置于10 ml容量瓶中，甲醇稀释至刻度，制得10 μg/ml内标溶液。

　　1．4．3 样本处理 精密吸取血浆样品1 ml，置10 ml具塞离心试管中，加入内标溶液25 μl，旋涡混合30 s。加入无水乙醇1 ml，漩涡混合30 s，再依次加入2 mol/L醋酸溶液100 μl、水500 μl，漩涡混合10 s。加入正己烷3 ml，旋涡混合1 min，4 500 r/min离心5 min。转移上层液至尖底试管中，氮气流吹干。残渣加入甲醇100 μl 旋涡混合30 s使溶解，10 000 r/min离心5 min，取上清液20 μl进样，记录色谱图，以ATRA、13-CRA、9-CRA峰面积（As）与内标峰面积（Ai）之比Y代入标准曲线计算ATRA、13-CRA与9-CRA血药浓度。
　　1．4．4 标准曲线 精密量取空白血浆1 ml，置10 ml具塞离心管中，分别加入不同浓度混合标准溶液20 μl，混匀，使ATRA、13-CRA与9-CRA血药浓度相当于1、5、10、20、50、100、200 ng/ml。按样本处理方法操作，分别以ATRA、13-CRA与9-CRA浓度（C）为横坐标，不同浓度ATRA、13-CRA、9-CRA与内标的峰面积比减去空白血浆中ATRA、13-CRA、9-CRA与内标峰面积比所得差值Y为纵坐标进行线性回归。
　　1．4．5 回收率及精密度 取健康人空白血浆1 ml，加入混合标准溶液20μL，使ATRA、13-CRA与9-CRA血药浓度分别相当于2．5、25、150 ng/ml。按样本处理方法操作，以不同浓度ATRA、13-CRA、9-CRA与内标峰面积比减去空白血浆中ATRA、13-CRA、9-CRA与内标峰面积比所得差值Y代入标准曲线计算ATRA、13-CRA与9-CRA血药浓度，以测得浓度与配制浓度之比计算方法回收率。以1 d内测得的ATRA、13-CRA与9-CRA浓度计算日内精密度，以1周内5次测定的浓度计算日间精密度。
　　
　　2 结果
　　
　　2．1 色谱行为 在上述色谱条件下，ATRA、13-CRA、9-CRA与内标物及血浆其他内源性物质能够较好分离，ATRA、13-CRA、9-CRA与内标的保留时间分别为8．8、7．2、8．2、6．3 min。色谱图见图1。
　　
　　2．2 线性范围 在1～200 ng/ml浓度范围内，3种维甲酸异构体血药浓度C与峰面积比Y有良好线性关系，其回归方程分别为：Y（ATRA）=0．059 4C+0．009 2，r=0．999 7；Y（13-CRA）=0．058 1C+0．006 7，r=0．999 4；Y（9-CRA）=0．056 8C+0．004 5，r=0．999 7。以信噪比S/N=3∶1计，ATRA、13-CRA、9-CRA最低检测浓度为0．5 ng/ml。
　　2．3 回收率及精密度 ATRA、13-CRA、9-CRA方法回收率分别为97．22%～108．80%、98．62%～104．80%、97．74%～102．24%。ATRA 日内RSD≤8．24％，日间RSD≤11．34%；13-CRA 日内RSD≤8．02％，日间RSD≤11．70%；9-CRA 日内RSD≤7．72％，日间RSD≤9．17%。结果见表2。
　　
　　3 讨论
　　
　　维甲酸化学性质活泼，见光易异构化或氧化降解，因此在样品提取过程中应特别注意避光操作。维甲酸脂溶性强，与血浆蛋白结合紧密，提取过程中首先加入乙醇去蛋白，使结合型的维甲酸游离，随后加入醋酸溶液，使血浆酸化，可提高萃取回收率。考察了乙醇用量（0．5、1、1．5 ml），2 mol/L 醋酸溶液用量（25、50、100 μl）对维甲酸提取率的影响，以加入乙醇1 ml及2 mol/L 醋酸溶液100 μl时，维甲酸提取率最高，正己烷一步萃取可使萃取回收率达到80％以上。
　　ATRA、13-CRA与9-CRA是3种内源性物质，其结构相近，采用等度洗脱难以将3者完全分离。分别考察了pH值为3．0、3．5、4．0、4．5、5．0、5．5和5．7的0．01 mol/L 醋酸钠缓冲液对ATRA、13-CRA与9-CRA分离的影响，结果显示pH值5．7时三者分离度最好。在此基础上，采用梯度洗脱使3种维甲酸异构体获得完全分离。
　　测定多份健康人血浆，其色谱图仅见ATRA及13-CRA，未检出9-CRA，可能与9-CRA血中含量极微，血药浓度低于0．5 ng/ml有关。因此本方法血中内源性9-CRA无干扰，9-CRA低浓度回收率及精密度结果均优于ATRA及13-CRA。
　　
　　参考文献
　　1 GAO F,SONG JD.Colorectal carcinoma cell apoptosis induced by all-trans retinoic acid.Chin J Cell Biol(细胞生物学杂志),2000,22(1):35-39.
　　2 TR Evans,SB Kaye.Reinoids:present role and future potential.Br J Cancer,1999,80(1-2):1-8.
　　3 YU ZC,YAO S,YU RH.Simultaneous determination of all-trans-and 13-cis-retinoic acid in human serum by HPLC.Chin J Pharm Anal(药物分析杂志),2000,20(4):226-228.
　　4 M.Michiko,Y Hirokazu,SHaruko,et al.Simultaneous quantification of retinol,retinal,and retinoic acid isomers by high-performance liquid chromatography with a simple gradiation.JChromatogr B,2001,757:365-368.
　　5 KS Carsten,B Abraham,NHeinz.Chromatographic analysis of endogenous retinoids in tissues and serum.Anal Biochem,2003,315:36-48.

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