芽胞杆菌JK05的鉴定及其对香蕉、玉米的促生和生防潜能研究

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　　摘  要：解淀粉芽胞杆菌、枯草芽胞杆菌和苏云金芽胞杆菌等是重要的有益微生物，被广泛应用于植物病虫的生物防治。前期分离获得1株芽胞杆菌JK05，对其形态、生理生化特征、16S rRNA和gyrA基因序列进行分析，将其鉴定为解淀粉芽胞杆菌植生亚种Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum。对峙培养实验结果显示，JK05菌株对多种植物病原镰刀菌具有拮抗作用。植物生长促进实验表明，JK05菌株对香蕉和玉米生长具有明显促进作用。盆栽实验结果显示，JK05菌株对香蕉枯萎病具有良好的防治效果。采用特异引物对JK05菌株基因组DNA进行PCR扩增，其可扩增到表面活性素（surfactin）、丰原素（fengycin）、伊枯草菌素A（iturin A）等抗生素合成基因。综上，JK05菌株具有良好的生防潜力，有望应用于生物农药和微生物肥料。
　　关键词：芽胞杆菌;拮抗;镰刀菌;促生长
　　中图分类号：S432.4      文獻标识码：A
　　Abstract： Bacillus strains， including Bacillus amyloliquefaciens， B. subtilis and B. thuringiensis， are important beneficial microbes， which have been applied for the biocontrol of plant diseases and pests. We isolated a Bacillus strain named JK05 previously， and it was identified as Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum based on its morphological characterization， physiological， and biochemical properties as well as 16S rRNA and gyrA gene seqences analysis. The confrontation assay showed that JK05 had antifungal activities against a number of fungal phytopathogens. Plant growth promotion assay revealed that JK05 played roles in promoting plant growth of maize （Zea mays L.） and banana （Musa spp.）. The pot assay demonstrated that JK05 possessed a prominent effect on the control of Fusarium wilt of banana caused by F. oxysporum f. sp. cubense. The PCR assay performed using the specific primers for genes related to the antibiotic biosynthesis revealed that the genome of JK05 contained the genes responsible for the synthesis of surfactin， fengycin and iturin A. The results suggested that JK05 had an excellent biocontrol potential， which could be applied as biopesticides and biofertilizers.
　　Keywords： Bacillus; antagonism; Fusarium; plant growth promotion
　　芽胞杆菌（Bacillus spp.）普遍存在于自然环境中，大部分芽胞是非致病的，相反许多芽胞杆菌对人类是有益的，可产生应用于不同领域的酶。解淀粉芽胞杆菌（B. amyloliquefaciens）是核糖核酸酶的来源，且产生的淀粉酶用于水解淀粉。枯草芽胞杆菌（B. subtilis）产生的蛋白酶subtilisin用于制备洗涤剂，产生的限制性内切酶BamH I用于DNA研究。另外，许多芽胞杆菌可产生抗生素、生长素（吲哚乙酸）、赤霉素等次生代谢物，其抗生素在医药和农业领域具有十分重要的应用价值[1-5]。但少数芽胞杆菌具有寄生致病性，常见寄生致病类的芽胞为：引起人类和动物炭疽病的炭疽杆菌（B. anthraci）、引起食物中毒的蜡样芽胞杆菌（B. cereus）、引起昆虫中毒的苏云金芽胞杆菌（B. thuringiensis）以及引起植物细菌病害的禾草巨大芽胞杆菌（B. megaterium pv. cerealis）[6]和短小芽胞杆菌（B. pumilus）[7] 等。此外，许多枯草芽胞杆菌、解淀粉芽胞杆菌菌株具有抑制植物病原真菌生长，促进作物生长、诱导植物抗性等功能，被应用于生产生物肥料和生物农药[1-2]。应用其有益微生物被认为是实现作物合理、安全治理最有前景的措施之一。
　　由尖孢镰刀菌古巴专化型（Fusarium oxysporum f. sp. cubense）引起的香蕉枯萎病是重要土传维管束病害。为探索香蕉枯萎病有效防治措施，国内外许多学者开展生防菌筛选和评价相关的研究。张妙宜等[8]从黄豆酱中分离筛选得到香蕉枯萎病菌拮抗细菌，其中1株为解淀粉芽胞杆菌，其粗蛋白和乙醇提取物具有稳定的抑菌活性。陈川雁等[9]发现，接种低浓度的枯草芽胞杆菌R31能激发香蕉根系免疫反应和活性氧产生，并延长R31在根表定殖，最终影响其对枯萎病的防效。王国芬等[10]对收集的生防菌资源进行抗性筛选，筛选到的3株拮抗芽胞杆菌分别施用于土壤中，其均可降低香蕉枯萎病菌数量。盆栽实验显示，其中A5-6菌株的防治效果可达72.3%。张琳等[11]发现，枯草芽胞杆菌TR21可湿性粉剂能降低粉杂1号发病率，而在叶腋上增加接种该菌的栓剂（剂型）处理可显著增加单株产量，并显著缩短粉杂1号生育期。石妞妞等[12]研究枯草芽胞杆菌T122F菌株在香蕉中的内生定殖及其对香蕉枯萎病的生防效果，盆栽实验结果显示，其防治效果达66.0%。Yuan等[13]发现，施用含有解淀粉芽胞杆菌NJN-6的生物菌肥可抑制香蕉枯萎病，并促进香蕉的生长。类似地，Zhang等[14]研究发现，施用枯草芽胞杆菌N11的生物菌肥可有效控制香蕉枯萎病的发生。Wang等[15]从健康香蕉根际分离获得一些枯萎病菌拮抗菌，其中包括解淀粉芽胞杆菌W19，将其与有机肥混合施用可显著降低香蕉枯萎病的发生，并促进香蕉的生长。同时W19可产生3种脂肽物质包括伊枯草菌素（iturin A）、杆菌霉素bacillomycin D和表面活性素surfactin，以及18种挥发性的真菌拮抗物质。可见，国内外学者对香蕉枯萎病的生物防治开展了大量研究，然而对分离菌株的拮抗和促生长的机理研究相对比较薄弱。本研究作者所在的研究室对芽胞杆菌进行了大量分离筛选，获得一些对多种病原镰刀菌具有拮抗作用的芽胞杆菌菌株。其中1株芽胞杆菌生长繁殖迅速，对香蕉枯萎病菌具有较强的拮抗作用，对该菌株进行鉴定，并分析生防应用潜能以及拮抗和促生长的机理，以期用于枯萎病的防治和生产生物肥料。 　　1  材料与方法
　　1.1  材料
　　1.1.1  供试菌株  JK05是从香蕉根际土壤中分离纯化获得的细菌菌株。供试10株真菌菌株（FG01-FG10）为本课题组保存的菌株。供试香蕉品种为巴西蕉（Musa spp. AAB cv. Brazil），玉米品种为京香糯2000（Zea mays L. cv. Jingxian?g?nuo 2000）。盆栽基质为椰糠与营养土混合物（体积比7∶3）。
　　1.1.2  培养基  供试细菌菌株JK05所用的培养基为LB培养基。供试真菌的培养与拮抗谱测定采用PDA培养基。IAA检测培养基（胰蛋白胨17 g/L、植物蛋白胨3 g/L、氯化鈉5 g/L、磷酸氢二钾2.5 g/L、葡萄糖2.5 g/L、色氨酸 100 mg/L，最终pH （7.3±0.2）。
　　1.2  方法
　　1.2.1  细菌基因组DNA提取  将细菌JK05接种于装有LB培养液的三角瓶中，置于摇床中于37 ℃、150 r/min条件下过夜培养，取1 mL培养物，10 000 r/min离心收集菌体，采用上海生工生物工程有限公司的细菌基因组DNA快速抽提试剂盒（B518225）所提供的方法提取细菌基因组DNA。
　　1.2.2  细菌菌株JK05的鉴定  用接种环取少量菌液划线培养于LB平板上，37 ℃过夜培养后，观察菌落形态，同时进行革兰氏染色，芽胞染色，在1000×显微镜下观察细菌细胞和芽胞形态。V-P实验、甲基红（MR）实验、明胶和淀粉水解、硝酸盐还原、柠檬酸盐利用、生长温度、pH、耐盐、溶菌酶抗性以及碳氮源利用等实验，参照《常见细菌系统鉴定手册》[16]和《伯杰氏细菌鉴定手册》[17]所列的相应方法进行。16S rRNA的PCR扩增扩增是采用通用扩增引物（27F： 5-AGAGTTT?GA?TC?CT?GGCTCAG-3和1492R： 5-TGACTGAC?TG?A?G?G?YTACCTTGTTACGACTT-3），以基因组DNA为模板，PCR扩增程序和反应体系按照Amann等[18]的方法进行，预计扩增约1500 bp的DNA片断。gyrA基因的扩增采用Chun等[19]报道的引物（p-gyrA-f： 5-CAGTCAGGAAATGCGTACGTCCT T-3和p-gyrA-r：5-CAAGGTA?A?T?G-CTCCAGGC ATTGCT-3），反应体系和扩增条件与扩增16S rRNA相同，预计扩增1025 bp的DNA片断。PCR扩增产物经琼脂糖凝胶电泳检测后，送生工生物工程（上海）股份有限公司测序。测序结果与9株其他模式菌株的16S rRNA和gyrA基因序列利用MEGA 5.2软件进行多序列比对，并采用邻接法（自展1000次）构建系统发育树。
　　1.2.3  JK05菌株拮抗植物病原镰刀菌的测定   将11种病原镰刀菌（表1）分别在PDA平板上培养5 d，沿菌落边缘打菌饼（直径约7 mm），各取1块接种于PDA平板上，距离平板中心2 cm左右，将细菌菌株JK05划线（长约4 cm）接种于镰刀菌菌饼的另一侧，使两者之间的距离大约为3 cm。对照用无菌水代替菌液划线，每个镰刀菌菌株重复3次。PDA平板于28 ℃培养5 d后，测量镰刀菌菌落半径。抑制率的测定采用公式：
　　抑制率=（对照菌落半径?拮抗菌落半径）/对照菌落半径×100%。
　　1.2.4  JK05发酵滤液对病原镰刀菌的测定  JK05菌株采用28 ℃、150 r/min振荡培养48 h后，10 000 r/min离心5 min收集上清液，并用滤器（孔径0.22 ?m）过滤制备成无菌滤液。测定方法，在距离菌饼边缘约3 cm处放置大小约4 cm×0.5 cm的灭菌滤纸片并分别加100 ?L无菌滤液代替菌液划线，无菌水为对照，每个菌株重复3次。28 ℃培养5 d，然后测量菌落半径，计算抑制率。
　　1.2.5  盆栽实验测定JK05菌株对香蕉枯萎病的防控效果  JK05菌株在LB培养液振荡培养48 h后，稀释10倍，取20 mL稀释液浇灌于香蕉幼苗（株高约10 cm）的根际，对照用稀释相同倍数的LB培养液替代。每组共处理20株，共重复3次。在施用JK05菌株2 d后，接种香蕉枯萎病菌，方法是取20 mL病原菌孢子悬浮液（约107个孢子/mL）接种于上述香蕉幼苗根际。病原菌接种处理30 d后，纵向剥开球茎和假茎基部，根据球茎褐化程度和植株萎蔫程度，划分病级，并统计病情指数。病级划分标准和病情指数统计参照文献[20]。防治效果计算依据如下公式：
　　防治效果=（对照植株病情指数JK05处理植株病情指数）/对照病情指数×100%。
　　1.2.6  JK05对香蕉和玉米生长的影响  细菌JK05接种于LB液体培养48 h，培养液用无菌水稀释10倍，配制成稀释液（2×108 CFU/mL）。取健康香蕉幼苗（株高约10 cm），每株浇灌稀释液20 mL，对照用稀释相同倍数的LB培养液。每个处理浇灌15株，重复3次。处理40 d后，测量株高，假茎直径、叶面积（最靠心叶的叶片）和地上部分鲜重。玉米种子播种于装有椰糠基质的花盆中，待种子萌发长出嫩芽时，采用同样方法每株浇灌稀释液20 mL，每个处理15株，对照用稀释相同倍数的LB培养液，重复3次。处理30 d后测量玉米株高、茎粗和地上部分鲜重。 　　1.2.7  生长素IAA的测定  JK05菌株振荡培养48 h后，10 000 r/min 离心10 min，取1 mL上清液加入2 mL Salkowsky试剂（35%高氯酸、1 mL三氯化铁溶液）[21]并混匀，于28 ℃静置30 min 后，在530 nm条件下进行比色，用10～100 ?g/mL 的标准IAA稀释液做标准曲线，单位为?g/mL。取未接菌的培养液作为对照。
　　1.2.8  解磷效果测定  采用NBRIP培养液（葡萄糖10 g，磷酸三钙5 g，氯化镁5 g，硫酸镁0.25 g，氯化钾0.2 g，硫酸铵0.1 g，蒸馏水1000 mL，pH 7.0）培养JK05菌株。取100 μL过夜培养的JK05菌液8 000 r/min离心5 min，去上清，菌体沉淀用等体积的无菌水重悬，接种于20 mL的NBRIP培养液中，于28 ℃、160 r/min震荡培养3 d。未接种菌的NBRIP作为对照，实验重复3次。采用钼锑抗比色法测定培养液中可溶性磷含量[22]。
　　1.2.9  抗生素合成基因的PCR扩增  采用Khabbaz等[23]研究中9对抗生素合成编码基因特异扩增引物，分别为：扩增2，4?二乙酰藤黄酚[2，4-diacetyl phloroglucinol （DAPG）， phlD]、吩嗪（phenazine， phzFA）、硝吡咯菌素（pyrrolnitrin， prnD）、藤黄绿菌素（pyoluteorin， pltC）、丰原素（fengycin， fenD）、芽胞菌霉素（bacillomycin D， bmyB）、杆菌溶素（bacilysin， bacA）、伊枯草菌素A（iturin A， ituD）、表面活性素（surfactin， srfAA）等抗生素合成基因DNA片断，预计扩增产物大小分别为629、1408、789、438、269、370、498、647、201 bp。PCR扩增产物回收后寄送至生工生物工程上海股份有限公司测序，所测序列用NCBI数据的BLASTn进行比对。
　　1.3  数据处理
　　数据重复测定3次，结果以平均值±标准误差表示。所有数据利用Origin pro 8.0软件进行单因素方差分析（ANOVA），对处理之间差异性多重比较采用LSD（least significant difference）分析。
　　2  结果与分析
　　2.1  JK05菌株形态特征
　　JK05菌株在LB平板培养基上生长良好，37 ℃静置培养16 h，可形成近圆形或不规则形状菌落，菌落乳白色不透明、表面干燥，边缘凸起，不产色素（图1A）。菌体细胞运动，呈长杆状，大小约为0.8 ?m×3.0 ?m。革兰氏染色阳性，芽胞呈卵圆形（图1B）。
　　2.2  生理生化特征
　　JK05菌好氧，可水解淀粉，液化明胶。接触酶阳性，V-P反应阳性，甲基红（MR）染色结果为阴性。硝酸盐还原实验和柠檬酸盐利用实验结果均为阳性。可水解酪素，不可分解酪氨酸。在含7%和10% NaCl的LB培养液中震荡培养过夜可以生长，在20～45 ℃温度下可生长，pH 5.0～8.0可生长，可在0.001%溶菌酶中生长。另外，JK05菌可利用葡萄糖、蔗糖、果糖、乳糖、半乳糖、肌醇、甘露醇等为唯一碳源，不能利用麦芽糖、木糖、甘露糖、山梨醇等作为唯一碳源，可利用甘氨酸、半胱氨酸、色氨酸、缬氨酸等可为唯一氮源。
　　2.3  16 S rRNA和gyrA基因聚类分析
　　PCR扩增结果显示，所扩增的16S rRNA的条带大小约为1500 bp，所扩增的gyrA基因DNA片断大小为1000 bp左右，将其回收并测序。结
　　果显示，所扩增的JK05菌株16S rRNA序列长为1463 bp，gyrA基因片断为1025 bp，分别提交至GenBank，获得登录号为MN080398和MN08?68?21。分别将其与其他模式菌株的16S rRNA和gyrA基因序列进行聚类分析，结果显示，在基于16S rRNA序列构建的聚类分析树中，JK05菌株与模式菌株Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum FZB42聚在同一分支（圖2），暗示两者在系统发育关系上较为密切。而在基于gyrA基因构建的聚类分析树中，JK05菌株也与模式菌株Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum FZB42聚在同一分支（图3），进一步暗示两者在系统发育关系上较为密切。
　　2.4  JK05菌株对11株镰刀菌的抑制效果
　　JK05菌株及其发酵液对11株病原镰刀菌的抑制率见表1。在PDA平板上，JK05菌株对FG01（禾谷镰刀菌Fusarium graminearum）的平均抑制率为70.13%，显著高于其对其他菌株的平均抑制率，其对FG11（F. oxysporum f. sp. radicis- ly?co?persici）的抑制效果最低，为40.93%。与上述的稍微不同，JK05发酵液对禾谷镰刀菌的平均抑制率最高，为61.27%，但与JK05发酵液对其他6个菌株（FG02-FG07）的抑制率（54.31%～56.73%）没有显著差异，对FG08～FG10的抑制率较高，对
　　标尺表示每个核苷酸位置有0.005个核苷酸替换，表示相似性百分比;分支点数字为自展支持率（%）。 　　2.5  JK05对香蕉枯萎病的防控效果
　　采用JK05菌液处理香蕉，香蕉植株发病指数为15.5±1.1，显著低于对照香蕉植株的平均发病指数52.9±1.4，对香蕉枯萎病的防治效果为70.5%，其表明施用JK05对香蕉枯萎病具有良好的防治效果。
　　2.6  JK05对香蕉和玉米生长的影响
　　施用JK05菌液对香蕉生长的影响见表2。与对照相比，JK05处理的香蕉株高、茎粗、地上部分鲜重和叶面积均显著增加（P<0.05），分别增加21.7%、22.7%、57.6%和19.5%，其表明施用JK05可显著促进香蕉植株的生长。
　　施用JK05菌液后，玉米的生长状况见表3。由表3可知，施用JK05处理的玉米植株平均茎粗、株高和地上部分鲜重显著高于对照处理（P< 0.05），分别增加56.3%、52.1%和171.8%，表明JK05菌株可促进玉米生长。
　　2.7  吲哚乙酸的测定
　　为了解JK05合成吲哚乙酸能力，将JK05菌株在添加色氨酸的培养液中培养3 d，通过测定发现，培养液中吲哚乙酸的浓度为（16.4±0.9） ?g/mL，而未加菌的对照未检测到吲哚乙酸。结果表明JK05可以色氨酸为前体合成生长素吲哚乙酸。
　　2.8  解磷效果
　　将JK05菌株在NBRIP培养液中震荡培养。由图4可知，随着时间延长，NBRIP培养液中的可溶性磷含量增加，在第8天达到最大值（13.9 mg/L），随后培养液中的可溶性磷含量有所降低。其表明JK05菌株具有一定的解磷能力。将其接种在有机磷平板上培养7 d，菌落和透明圈直径比为1∶1，表明JK05菌株具有降解有机磷的能力。将JK05接种于含磷矿粉的培养液中培养5 d，培养液可溶性磷含量为15.1 mg/L，表明JK05具有一定的降解难溶磷矿粉为可溶性磷的能力。
　　2.9  抗生素合成基因PCR扩增
　　以JK05菌株的基因组DNA为模板，采用9对抗生素合成基因特异引物进行PCR扩增。以JK05基因组DNA为模板，可扩增到丰原素（fengycin， fenD）、芽胞菌霉素（bacillomycin， bmyB）、杆菌溶素（bacilysin， bacA）、伊枯草菌素A（iturin A， ituD）、表面活性素（surfactin， srfAA）等抗生素合成基因DNA片断，其大小与预计一致，而另外4个抗生素基因[2，4?二乙酰藤黄酚（2，4?DAPG， phlD）、吩嗪（phenazine， phzFA）、硝吡咯菌素（pyrrolnitrin， prnD）、藤黄绿菌素（pyoluteorin， pltC）] DNA片断无扩增条带（图5）。将上述所扩增的DNA片断进行测序，结果表明，所扩增的丰原素、芽胞菌霉素、杆菌溶素、伊枯草菌素A、表面活性素合成基因DNA片断与已知的模式菌株FZB42对应基因序列一致性分别为99%、96%、99%、97%和98%。以上结果表明，JK05菌株基因组包含丰原素、芽胞菌霉素、杆菌
　　图4  JK05菌株对无机磷的溶解效果
　　Fig. 4  Inorganic phosphate solubilization by JK05
　　M：DL2000 DNA Marker;1：合成DAPG的phlD基因;2：合成吩嗪的phzFA基因;3：合成硝吡咯菌素的基因prnD;4：合成藤黄绿菌素基因pltC;5：合成丰原素的fenD;6：合成芽胞菌霉素D的基因bmyB; 7：合成溶杆菌素Bacilysin;8：合成伊枯草菌素的基因ituD;9：合成表面活性素的基因srfAA。
　　M： DL2000 DNA Marker; 1： phlD gene for 2，4-diacetyl phloroglucinol （DAPG）; 2： phzFA for phenazine; 3： prnD for pyrrolnitrin; 4： pltC for pyoluteorin; 5： fenD for fengycin; 6： bmyB for bacillomycin D; 7： bacA for bacilysin; 8： ituD for iturin A;
　　9： srfAA for surfactin.
　　图5  PCR扩增JK05菌株的抗生素合成基因
　　Fig. 5  PCR amplification products of 9 antibiotic
　　biosynthetic genes in JK05
　　溶素、伊枯草菌素A和表面活性素等5种抗生素的合成基因。
　　3  讨论
　　根据JK05菌株的形态、生理生化特征可判断JK05菌株为芽孢杆菌。同时，16S rRNA聚类分析显示，其与解淀粉芽胞杆菌植生亚种B. amyloli?quefa?ciens subsp. plantarum FZB42在系统发育关系上十分接近。另外，采用gyrA基因部分序列进行聚类分析，结果也表明JK05菌株与解淀粉芽胞杆菌植生亚种FZB42菌株在系统发育关系上更加接近。因此，将JK05鉴定为解淀粉芽胞杆菌植生亚种B. amyloliquefaciens subsp. plantarum。研究报道，解淀粉芽胞杆菌植生亚种FZB42是一株促进植物生长的根际菌，对多种植物病原菌具有拮抗作用，其可产生表面活性素、伊枯草菌素，丰原素等脂肽抗生素，且具有合成吲哚乙酸的能力，其基因组包含对应的抗生素和吲哚乙酸合成编码基因[24-25]。JK05与FZB42在系统发育上与其接近，暗示兩者可能在功能上也具有相似性。拮抗实验结果表明，接种JK05及其无细胞发酵液可以抑制11种植物病原镰刀菌的菌丝生长，而植物促生长实验证实，施用JK05菌株可以促进香蕉幼苗和玉米植株的生长，表明JK05与FZB42相似，具有抑制植物病原真菌和促进植物生长的能力。此外，张妙宜等[8]报道的解淀粉芽孢杆菌Y-4菌株对香蕉枯萎病菌在内许多病原真菌具有抑制作用。王国芬等[10]报道A5-6是一株解淀粉芽孢杆菌，并且对香蕉枯萎病的防效达72.3%。Yuan等[13]报道的NJN-6菌株和Wang等[15]报道的菌株W19，均鉴定为解淀粉芽孢杆菌，且其具有防治香蕉枯萎病和促进香蕉生长的作用。因此，JK05菌株与上述的4株解淀粉芽孢杆菌相似，均具有抑菌谱广和对枯萎病防效较好的特性，以上结果暗示环境中广泛存在对植物病原真菌具有生防潜力的解淀粉芽孢杆菌菌株。解磷实验结果表明，JK05具有溶解无机难溶磷和有机磷的能力，同时能用色氨酸生产生长素吲哚乙酸，其能力与其促进植物生长相对应。因此，可推测JK05可能通过溶解土壤中难溶的无机磷，为植物提供有效养分，同时产生植物生长激素吲哚乙酸，从而促进植物生长。这种机制与许多报道的芽胞杆菌促进生长的机制相似[1， 3， 25]。在抑制植物病原真菌的机制方面，大量研究报道芽胞杆菌产生的脂肽物质如伊枯草菌素丰原素等可抑制真菌的生长[4-5]，因此，JK05菌株抑制病原镰刀菌生长的机制可能与脂肽物质的产生有关。而PCR扩增结果表明，用抗生素合成基因特异引物进行PCR扩增，可从JK05基因组中检测到伊枯草菌素，丰原素等基因。因此，JK05菌株可能通过产生伊枯草菌素，丰原素等脂肽抗生素抑制病原真菌的生长。 　　综上所述，从香蕉根际土壤分离的菌株JK05被鉴定为解淀粉芽胞杆菌植生亚种（Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum）。该菌株具有抑制植物病原镰刀菌生长和促进植物生长的作用。其可能通过溶解有机磷和难溶的无机磷为植物提供有效磷养分，以及产生植物激素吲哚乙酸等机制促进植物的生长，可能通过分泌脂肽抗生素如伊枯草菌素，丰原素 等抑制病原真菌的生长。JK05菌株的其潜能表明其将来有望用于微生物肥料和杀菌剂的制备。
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