您好, 访客   登录/注册

响应面法优化软枣猕猴桃组培增殖培养基

来源:用户上传      作者:

  摘要:目的:研究优化软枣猕猴桃的增殖培养基。方法:以软枣猕猴桃初代培养的不定芽为外植体,利用响应面法对其增殖培养基进行优化。在单因素的试验基础上,根据Box-Behnken的中心组合试验设计原理,以6-BA、IAA、IBA为试验因子,植株再生频率为响应值,进行三因素三水平的试验设计。结果表明:三因素对植株再生频率的影响力大小为6-BA>IBA>IAA,最终得到的二元回归方程显示,一步成苗的培养基优化结果为MS+6-BA1.61mg/L+IAA0.55 mg/L+IBA0.33 mg/L。在此条件下,最佳再生频率预测值为7.27,实际操作结果为7.23,说明该方程预测与实际试验拟合度较好,该优化方案有实际意义和可行度。
  关键词:响应面;优化;增殖系数;软枣猕猴桃
  基金项目:吉林省重点科技攻关项目:编号20140204030NY,编号20140101271JC; 科技创新基金项目:编号(2017496)
  中图分类号: Q949.758.2                              文献标识码:  A                   DOI编号: 10.14025/j.cnki.jlny.2019.02.024
   软枣猕猴桃(Actinidia arguta)为多年生落叶藤本,在我国主要分布在东北、华北、西北及长江流域,在吉林省主要分布在长白山区各县,是著名的经济野果[1]。野生软枣猕猴桃酸甜可口,富含营养成分,如黄酮及苷、氨基酸、有机酸、油脂及多糖、蛋白质、脂肪、维生素A、维生素C、叶绿素、果胶、胡萝卜素等[2,3],还可加工成果脯、果酒、果汁等产品,有良好的食用价值。其根、茎、叶均可入药,可治疗消化不良、腹泻、呕吐和风湿性关节痛,有抗衰防癌的功效[4],具有良好的药用价值和经济价值。
   软枣猕猴桃的常见繁殖方法有种子繁殖、扦插繁殖和嫁接繁殖,但种子繁殖生长周期长,扦插和嫁接成活率低[5],组织培养是快速繁殖大量植株并保留其优良性状的有效途径。目前,关于软枣猕猴桃的组培已有一些研究报道,在增殖阶段的研究中[6-9],一般通过调整植物生长调节剂的种类及浓度,来筛选增殖系数更高的培养基,但增殖系数不够理想。增殖培养常用的植物生长调节剂有6-BA、IBA、NAA、IAA、KT等,但研究其中交互作用的文章未见报道。本次试验用响应面的研究方法,选用6-BA、IAA、IBA三种植物生长调节剂,以初代培养产生的不定芽为试验材料,探究最适宜软枣猕猴桃增殖的培养基,以及三种植物生长调节剂之间的交互作用,以期获得高于前人研究的增殖系数,在一定程度上优化软枣猕猴桃的快繁体系,为今后的相关研究提供理论实践基础。
  1 试验材料与方法
  1.1试验材料
   外植体为长白山野生软枣猕猴桃带芽茎段,于2017年5月采自吉林长白山地区,经消毒后接入诱导培养基:MS+6-BA1.0mg/L+IBA0.1mg/L中,培养30d后,选取长势一致的不定芽为试验材料。
  1.2 试验方法
  1.2.1单因素试验 为探究每种生长激素的不同浓度对外植体产生的影响,以MS为基本培养基,将6-BA、IBA、IAA分别设置5种浓度:6-BA(0.5mg/L,1.0mg/L,1.5mg/L,2.0mg/L,2.5mg/L);NAA(0.05mg/L,0.10mg/L,0.20mg/L,0.40mg/L,0.80mg/L);IAA(0.05mg/L,0.10mg/L,0.20mg/L,0.40mg/L,0.80mg/L)。将不定芽分别接种到培养基内,每个处理接10个不定芽,3次重复,30d后,统计增殖系数。增殖系数=培养30天后不定芽总数/接种的不定芽数。
  1.2.2 响应面优化试验 在单因素试验的基础上,应用响应面分析法,根据Box-Behnken的中心组合试验设计原理,以6-BA、IAA、IBA为试验因子,增殖系数为响应值,设计三因素三水平的优化试验,见表1,每个水平处理10个组培苗,培养周期为30d。
  1.3 培养条件
   基础培养基为MS培养基,蔗糖30g/L,琼脂粉8g/L,pH值为5.8~6.0。培养环境为温度(25±2)℃,光照强度2000lx,每天光照14h。
  1.4 数据分析
   采用SPSS20.0和Design-Expert8.0.6软件对数据进行整理与分析。
  2 结果与分析
  2.1单因素试验结果
  2.1.1 6-BA浓度对增殖系数的影响 由表2可知,6-BA对不定芽增殖的效果较显著,6-BA浓度为0.5、1.0mg/L时,产生的新芽叶片为嫩绿色,芽细弱矮小,长势不佳。随着浓度的升高,增殖系数随之升高,6-BA浓度为2.0mg/L时,达到了最佳增殖系数4.07,新生芽多,茎较粗壮,与其他处理有显著差异。但浓度超过2.5mg/L,增殖率下降,植株叶片边缘发黄,芽较细弱,长势不佳,可见6-BA浓度过高,对芽苗增殖分化有抑制作用。
  2.1.2 IAA浓度对增殖系数的影响 由表3可知,低浓度的IAA对不定芽几乎无促进增殖的作用,新生芽极少,且茎段及叶片呈白绿色,长势不佳。IAA浓度越高,不定芽增殖系数越高,当IBA浓度为0.40mg/L时,最佳增殖率为2.37,芽苗翠绿色,長势健壮。
  2.1.3 IBA浓度对增殖系数的影响 由表4可知,低浓度的IBA对不定芽增殖的促进作用较弱,芽呈嫩绿色,较细弱,随着IBA浓度的升高,增殖系数有所上升,新生芽渐多,且翠绿粗壮。IBA浓度为0.20mg/L、0.40mg/L时增殖系数无显著差异,新生芽较多,芽长势健康。IBA浓度为0.40mg/L时,增殖系数最佳,植株健壮,长势良好。   2.2 软枣猕猴桃增殖培养基的优化试验结果
  2.2.1回归方程分析  以6-BA(X1)、IAA(X2)、IBA(X3)为自因素,以植株再生频率(Y)为响应值,设计了17组试验,5个中心试验,见表5。得到回归方程为:Y=7.04+0.69X1+0.33X2+0.51X3+0.20X1X2+0.12X1X3-0.10X2X3-1.76X12-1.03X22-0.51X32。R2=0.9694,说明试验值与预测值有较高的相关性,该回归模型的P值<0.0001,有极显著性。失拟项F值=0.0551>
  0.05,不显著。说明该方程模型拟合度良好,试验误差小。表6中,X1、X3、X12、X22均呈极显著影响(P<0.01),X2、X32呈显著影响(P<0.05)。X1X2、X2X3、X1X3不显著。说明三种单因素对植物的增殖系数有显著影响,但三者之间的交互作用不显著。单因素对响应值的影响力大小为6-BA>IBA>IAA。
  2.2.2响应面分析 等高线的形状可体现两因素交互作用的大小,圆形表示交互作用小,椭圆形则相反[10]。响应面的坡度变化可体现因素对响应值的影响力,坡度平缓说明影响力小,坡度陡说明影响显著[11]。由图1~图3可知,IAA与6-BA的曲面最陡,呈明显凸面,6-BA与IBA的曲面偏陡,IBA与IAA的曲面相对平缓。由此可知,三种因素的交互作用对响应值的影响力大小为X1X2>X1X3>X2X3。
  2.2.3 模拟方程的验证试验 通过二次回归方程的分析可得出软枣猕猴桃增殖培养基中,三种植物生长调节剂的最佳浓度为:6-BA1.61mg/L,IAA0.55 mg/L,IBA为0.33mg/L,最佳增殖频率预测值为7.27。对该模型进行三次验证试验,每次处理10个不定芽,得出的三次结果为:7.3,6.9,7.5,平均结果为7.23。与方程预测值接近,说明该方程预测与实际试验拟合度较好,该优化方案有实际意义和可行度。
  3 讨论
   增殖培养是组培试验中至关重要的阶段,植物生长调节剂的种类及浓度对不定芽的分化、增殖及组培苗的长势有着不同程度的影响[12.13]。本次试验以初代培养诱导出的不定芽为试验材料,通过调整6-BA、IAA、IBA三种植物调节剂的浓度,筛选出了适宜软枣猕猴桃增殖的培养基,最佳增殖系数为7.23。有研究用2mg/L的6-BA和0.2mg/L的IBA对软枣猕猴桃进行增殖培养,得到的最佳增殖系数为5.0[14]。也有研究用到0.8mg/L的6-BA和0.3mg/L的NAA,得到最佳增殖系数为4.84[15]。还有研究筛选的最佳增殖培养基为MS+BA 1.5mg·L-1+IBA 0.1mg·L-1,增殖系数达4.5[16]。本次的試验结果明显高于上述研究,可能是因为所选的3种植物生长调节剂间相互作用对不定芽有更好的促进作用,其浓度经过Design-Expert8.0.6所得方程更为精确的计算,所以有了很好的增殖效果,高于部分前人的研究结果。
   在单因素的试验过程中,发现低浓度的植物生长调节剂对不定芽促进作用不显著,植株长势细弱,可能因浓度未达到其生长分化的需求量。但6-BA浓度为2.5mg/L,IBA浓度为0.8mg/L时,增殖率都有所下降,且试管苗叶片发黄卷曲,茎段细弱,长势不佳。这与前人研究结果一致,该研究发现,当添加的6-BA和IBA的浓度逐渐高于2.0mg/L和0.2mg/L 时,丛生芽增殖系数呈下降趋势[17]。说明高浓度的生长调节剂对试管苗的增殖分化促进效果减弱,抑制其增殖生长,在组培试验中,要控制好植物生长调节剂的浓度,才可得到最佳的试验效果。
   响应面法是一种综合试验设计和数学建模的优化方法,通过对具有代表性的局部各点进行试验,回归拟合全局范围内因素与响应值间的函数关系,计算各因素最佳水平值[18]。相比于常用的正交设计,响应面法可分析几种因素间的交互作用,以达到较全面地反映各因素水平的效果。可在整个区域上因素的最佳组合和响应值的最优值,且实验次数少,节省了试验成本和时间。
  参考文献
   [1]牛晓林.长白山软枣猕猴桃组织培养和快繁技术研究[D].南京林业大学,2012.
   [2]孙宁宁.长白山野生软枣猕猴桃的成分分析及保鲜研究[D].吉林农业大学, 2007.
   [3]张岚芝,张先,周美英,等.3 种长白山野生猕猴桃营养及功能成分比较[J].延边大学农学学报,2010,32(02):106-109,118.
   [4]王晓东,段全猛.软枣猕猴桃的利用与栽培[J].特种经济动植物,2006(02):33-34.
   [5]郑小华.软枣猕猴桃茎、叶离体培养与植株再生的研究[D].四川农业大学,2008.
   [6]刘延吉,郝桂杰,姜岩岩,等.不同品种野生软枣猕猴桃最佳组培方法的研究[J].北方园艺,2012(17):124-126.
   [7]邓践.软枣猕猴桃“龙成2号”组培扩繁技术研究[J].辽宁林业科技,2017(02):38-40.
   [8]胡皓,张志东.软枣猕猴桃“魁绿”品种组培微繁技术研究[J].吉林农业,2011(02):71-72.
   [9]屈德洪,吴景芝,吴兴恩,等.野生软枣猕猴桃种子萌发及离体快繁技术研究[J].西部林业科学,2017,46(06):56-60.
   [10]代文亮,程龙,陶文沂.响应面法在紫杉醇产生菌发酵前体优化中的应用[J].中国生物工程杂志,2007(11):66-72.
   [11]张黎明,李瑞超,郝利民,等.响应面优化玛咖叶总黄酮提取工艺及其抗氧化活性研究[J].现代食品科技,2014,30(04):233-239.
   [12]谭文澄,戴策刚.观赏植物组织培养技术[M].北京:中国林业出版社,1999.
   [13]张建华,张建凤.几种植物生长调节剂及硝酸盐对唐菖蒲继代苗芽增殖的影响[J].青海大学报,2012,30(05):20-22.
   [14]刘长江,刘国成,赵德英,孙晓荣.野生软枣猕猴桃茎尖培养研究[J].中国树,2009(02):32-34.
   [15]屈德洪,吴景芝,吴兴恩,等.野生软枣猕猴桃种子萌发及离体快繁技术研究[J].西部林业科学,2017,46(06):56-60.
   [16]卢华,林强.“桓优1号”软枣猕猴桃离体快繁研究[J].辽宁林业科技,2016(02):27-29.
   [17]赵芮.软枣猕猴桃离体快繁技术的研究[D].吉林农业大学,2016.
   [18]李莉,张赛,何强,胡学斌.响应面法在试验设计与优化中的应用[J].实验室研究与探索,2015,34(08):41-45.
   [19]赵强,余四九,王廷璞,等.响应面法优化秃疮花中生物碱提取工艺及抑菌活性研究[J].草业学报,2012,21(04):206-214.
   [20]海洪,汪坤,金文英,王新雯.Box-Behnken响应面法优化超声波提取蚕沙中叶绿素的工艺研究[J].食品工业科技,2009,30(03):207-209+211.
   作者简介:赵春莉,博士,副教授,研究方向:观赏植物资源引种驯化及繁殖技术。
转载注明来源:https://www.xzbu.com/2/view-14882018.htm